原代细胞培养的注意事项主要包括以下几个方面:
1、取材与处理:
选择健康、无感染的组织或器官作为细胞来源,以确保获得高质量的原代细胞。取材操作要迅速,尽量减少组织在空气中暴露的时间,避免污染和细胞损伤。例如,对于孕鼠取材,浸泡乙醇时间应控制在1分钟左右,不能过长,以确保胚胎细胞活性。
2、无菌操作:
整个取材和培养过程都要严格进行无菌操作,操作要求应高于外科手术标准。使用经过灭菌的工具和试剂,实验者离开超净台时,要随时用肘部关闭工作窗。
3、消化与分离:
如果采用酶消化法,要根据组织特性选择合适的消化酶(如胶原酶、胰酶等),并控制好消化时间和温度。例如,胰酶的温度应低于37℃,浓度只需平时消化细胞浓度的一半,以避免细胞被过度消化而受损。组织块法中,组织块剪碎后接种到培养瓶壁上,要注意组织块的粘附情况,避免组织块漂浮起来影响细胞生长。
4、培养条件:
提供适宜的培养条件,包括温度、湿度、氧气浓度、营养物质等。一般来说,动物细胞培养的适宜温度为36.5℃±0.2℃,二氧化碳浓度为5%,相对饱和湿度为95%。培养液的选择要根据不同的细胞类型和实验要求进行。常用的有L/HDMEM、F12DMEM、RPMI1640等。
5、观察与换液:
定期观察细胞的生长状况,包括细胞形态、贴壁情况、是否有污染等。原代细胞在培养2天后可能会出现细胞液变黄的现象,这是正常现象,是由于细胞在贴壁生长过程中释放CO2和其他物质导致培养液PH发生改变。根据细胞的生长情况及时换液,一般48~72小时可换液一次。换液时要注意去除漂浮的组织块和残留的血细胞。
6、传代与冻存:
原代细胞的传代次数不宜过多,一般不超过3-5次,否则会导致细胞老化和突变。当细胞生长至80%~90%融合时,可以进行传代或冻存。冻存液的配制要根据具体的细胞类型和实验室的经验来确定,常见的配方有10%DMSO+90%胎牛血清等。
7、细胞鉴定:
有时候获取的原代细胞可能不是期望的细胞类型,需要进行细胞鉴定。可以通过购买特定的细胞表面标志物抗体或染色试剂来进行鉴定。
原代细胞培养需要注意细胞的来源、处理、无菌操作、消化与分离、培养条件、观察与换液、传代与冻存以及细胞鉴定等方面。只有严格遵守这些注意事项,才能保证原代细胞培养的成功和细胞的质量。